Какие они — “идеальные” яйцеклетка и сперматозоид для ЭКО?

Какие они — “идеальные” яйцеклетка и сперматозоид для ЭКО?

Успех методики ЭКО при лечении бесплодия зависит от многих факторов. И важное значение здесь имеет качество отобранных женских и мужских репродуктивных клеток.

Запись на консультацию
* обязательные для заполнения поля
Cпасибо ваше сообщение отправленно

Ведь чем качественнее генетический материал, тем больше шансов получить эмбрионы с высоким имплантационным потенциалом и выносливостью.

На определенном этапе экстракорпорального оплодотворения перед эмбриологом возникает нелегкая задача: выбрать из миллионов сперматозоидов самого активного, с правильной морфологией и соединить его со зрелой и пригодной к оплодотворению яйцеклеткой.

Какие же они – идеальные мистер и миссис Половые Клетки для оплодотворения при ЭКО? Какие методики и оценки используют врачи для их отбора? Об этом расскажем в нашей статье.

Изучение неудачных циклов ЭКО показало, что оценка ооцитов (женских половых клеток) во многих случаях предсказывала результаты ЭКО лучше, чем оценка эмбриона.

Какие же основные критерии оценки качества яйцеклеток?

Как правило, самые здоровые яйцеклетки у женщин созревают в возрасте от 20 до 30 лет. И уже после 35 лет качество заметно ухудшается. Стимуляция яичников в протоколе ЭКО позволяет ускорить их созревание, но не гарантирует получение зрелых и качественных ооцитов1.

Как определить качество яйцеклетки?

Эмбриолог проводит визуальную оценку ооцитов с помощью бинокулярного микроскопа сразу после их забора из яичников женщины.

Каждая яйцеклетка оценивается в комплексе наиболее значимых критериев2:

  • ооцит-кумулюсного комплекса; 
  • прозрачности оболочки;
  • структуры цитоплазмы; 
  • перивителлинового слоя;
  • морфологии первого полярного тельца; 
  • формы ооцита; 
  • веретена деления.

Хорошая цитоплазма всегда однородная, одного цвета и без гранул. О некачественной яйцеклетке сигнализирует присутствие вакуолей, темный цвет, наличие гранул и деформаций.

Проверка качества яйцеклетки позволяет провести отбраковку некачественных экземпляров и тем самым выбрать наиболее подходящий для процедуры ЭКО генетический материал, который обозначают аббревиатурой MII2

Журнал Assisted Reproduction and Genetics в своей статье “Количественный и морфологический анализ ооцитов, собранных во время 438 циклов ЭКО” приводит факты того, что частота беременностей повышается с увеличением количества извлеченных ооцитов3.

Проверка качества мужских половых клеток.

Функциональный анализ

Измеряет способность одного сперматозоида доставлять правильный набор хромосом в яйцеклетку. Для этого сперматозоиды должны продуцироваться в достаточном количестве, иметь нормальную подвижность и форму, проходить через цервикальную слизь в матку. Дефекты любого из этих сложных процессов могут привести к мужскому бесплодию5.

Какие они — “идеальные” яйцеклетка и сперматозоид для ЭКО?

 

Морфология.

Окрашивание мазка семенной жидкости позволяет количественно оценить нормальные и аномальные морфологические формы сперматозоидов в эякуляте. Мазки оцениваются по морфологии с использованием классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) и критериев Крюгера6

Метод ВОЗ классифицирует спермии аномальной формы на определенные категории с учетом аномалий головы, хвоста и средней части тела, что основано на внешнем виде сперматозоидов (> 30% нормальных форм)4

Система анализа морфологии по Крюгеру очень строга, поэтому во время подсчета количества спермиев с нормальной морфологией учитывают лишь клетки “идеальной” формы. Все остальные клетки сразу относят к аномальным (> 14% нормальных форм)4

При определении клинических значений морфология должна использоваться вместе с другими критериями, а не как отдельный параметр, так как в целом беременность возможна с низкой оценкой морфологии при комбинации параметров.

Подвижность.

Нормальный анализ спермы должен содержать не менее 50% прогрессивно подвижных сперматозоидов. Если более 50% сперматозоидов неподвижны, их следует проверить на жизнеспособность. Устойчивая низкая моторика часто приводит к неудаче оплодотворения7

Тестирование жизнеспособности сперматозоидов. 

Используется для определения того, живы неподвижные сперматозоиды или нет. Анализ проводят, когда подвижность сперматозоидов составляет менее 5-10%8.

При подтверждении мужского бесплодия и нарушениях развития беременности перед процедурой ЭКО в перечень дополнительных методов обследования ВОЗ рекомендует такие исследования2:

  • Фрагментацию ДНК сперматозоида – выявление разрывов цепочек ДНК сперматозоида или нарушение его целостности. Чем ниже уровень сохранности генетического материала, тем меньше шансов наступления беременности9.
  • Оксидативный стресс сперматозоидов. Когда активные формы кислорода присутствуют в сперме в избытке, это может спровоцировать патологические изменения сперматозоидов, вызывая окислительное повреждение клеточных оболочек, белков и ДНК.
  • МАР-тест (Антиспермальные антитела). Это класс сложных белков (иммуноглобулины типов IgG, IgA или IgM), ограничивающих скорость и жизнеспособность гамет мужчины. При их выявлении становится ясно, что организм воспринимает спермии как “чужие” клетки и атакует их.
  • НВА-тест – позволяет проанализировать способность спермиев связываться с гиалуронатом (составляющая клеточного окружения яйцеклетки), оценив при этом их зрелость, и проверить на присутствие аномалий.

Как видим, методов и оценок мужской фертильности существует достаточно, но для каждого конкретного случая доктор обозначает индивидуальный перечень необходимых исследований.

Таким образом, оценка яйцеклеток и сперматозоидов до проведения процедуры ЭКО – это сложный и трудоемкий процесс, при котором скрупулезное внимание уделяется пороговым значениям, морфологии, внешнему виду и другим критериям. Но такие оценки предоставляют полезную клиническую информацию для получения высококачественных эмбрионов и повышают шансы на долгожданную беременность.

Источники

  1. Американське товариство репродуктивної медицини (ASRM). Лікарські препарати, що стимулюють овуляцію. 2016 р. – Режим доступа : http://www.reproductivefacts.org/globalassets/rf/news-and-publications/bookletsfact-sheets/english-fact-sheets-and-info-booklets/booklet_medications_for_inducing_ovulation.pdf
  2. Rienzi L., Vajta G., Ubaldi F. Predictive value of oocyte morphology in human IVF: a systematic review of the literature. Human Reprod Update 2011; 17: 1: 34–45.
  3. Christiane Wittemer, Jeanine Ohl, Karima Bettahar-Lebugle, Stéphane Viville, Israel Nisand. A quantitative and morphological analysis of oocytes collected during 438 IVF cycles. Journal of Assisted Reproduction and Genetics 17 (1), 44-50, 2000. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3455195/pdf/10815_2004_Article_221175.pdf
  4. S. S. Vasan. Semen analysis and sperm function tests: How much to test? Indian Journal of Urology: IJU: Journal of Urological Society of India. 2011 Jan-Mar; 27(1): 41–48. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3114587/
  5. Lamb DJ. Semen analysis in 21st century medicine: the need for sperm function testing. Asian J Androl. 2010; 12:64–70. – Режим доступа: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3739671/?report=reader
  6. Menkveld R, Stander FS, Kotze TJ, Kruger TF, van Zyl JA. The evaluation of morphological characteristics of human spermatozoa according to stricter criteria. Hum Reprod. 1990; 5:586–92. – Режим доступа: https://academic.oup.com/humrep/article-abstract/5/5/586/598899?redirectedFrom=fulltext
  7. Aitken RJ, Sutton M, Warner P, Richardson DW. Relationship between the movement characteristics of human spermatozoa and their ability to penetrate cervical mucus and zona-free hamster oocytes. J Reprod Fertil. 1985; 73:441–9. – Режим доступа:https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/3989795/
  8. Bachtell NE, Conaghan J, Turek PJ. The relative viability of human spermatozoa from the vas deferens, epididymis and testis before and after cryopreservation. Hum Reprod. 1999; 14:3048–51. – Режим доступа:https://academic.oup.com/humrep/article/14/12/3048/2913085
  9. Evenson DP, Jost LK, Marshall D, Zinaman MJ, Clegg E, Purvis K, et al. Utility of the sperm chromatin structure assay as a diagnostic and prognostic tool in the human fertility clinic. Hum Reprod. 1999; 14:1039–49. – Режим доступа:https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10221239/

Вам будет интересно узнать: